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OneStepGibsonCloningKit 無縫克隆
簡要描述:

本制品不依賴于T4連接酶,不受載體和目的片段的酶切位點限制,而直接用重疊片段重組的方法,采用特殊的酶組合可以將任意方法線性化后的載體和與其兩端具有15-25bp重疊區(qū)域的PCR片段(平端)定向重組,可以快速實現(xiàn)1-5個片段的高效無縫克隆。
OneStepGibsonCloningKit 無縫克隆

  • 產(chǎn)品型號:42112
  • 廠商性質:經(jīng)銷商
  • 更新時間:2025-07-17
  • 訪  問  量:318
詳情介紹

One Step Gibson Cloning Kit

(可連接1-5個片段)


OneStepGibsonCloningKit   無縫克隆 


 目錄號:42112

  量:

Components

42112-10 (10次)

42112-50(50次)

2 × Gibson Cloning Mix

50 μl

250 μl

 

產(chǎn)品儲存:-20°C保存,避免反復凍融

制品說明:本制品不依賴于T4連接酶,不受載體和目的片段的酶切位點限制,而直接用重疊片段重組的方法,采用特殊的酶組合可以將任意方法線性化后的載體和與其兩端具有15-25bp重疊區(qū)域的PCR片段(平端)定向重組,可以快速實現(xiàn)1-5個片段的高效無縫克隆。

產(chǎn)品特點:

1. 30分鐘可以將一個或者多個長、短PCR擴增片段(平端)插入載體。

2. 不受載體和插入片段酶切位點的可用性和載體平端/粘性末端的限制,可以在任意位點進行克隆。

3. 無縫克隆,插入點不會引入不需要的堿基序列。

4. 高效、準確,陽性率>95% 

 

具體產(chǎn)品的參數(shù)以收到產(chǎn)品說明書的參數(shù)為準



線性化載體和插入DNA片段的制備:

A:線性化載體的制備

 (1). 酶切來源:酶切所得線性載體,平末端或者粘端、單酶切或者雙酶切均可,酶切后膠回收。

注: 無縫拼接和克隆反應體系內無雙鏈DNA連接酶,不會發(fā)生載體自連反應。因此,即使是以單酶切方式制備的線性化載體也無需進行末端脫磷酸處理。重組產(chǎn)物轉化后出現(xiàn)的假陽性克隆 (無插入片段) 是由酶切不wan全未線性化環(huán)狀載體轉化而形成的。我們推薦酶切后膠回收可以把這種未線性化載體比例降低到zui低程度。

(2). 反向PCR來源:建議使用高保真DNA聚合酶(貨號:P517-05)制備,如果擴增條帶單一可以通過PCR產(chǎn)物純化(貨號:DC012-100)獲得載體,否則通過膠回收(貨號:DC011-100)獲得載體。

注:反向PCR的質粒模板也是非線性化載體,也可能導致假陽性克隆(無插入片段),因此PCR來源線性載體(PCR產(chǎn)物)純化前用Dpn I內切酶消化質粒模板,可以降低背景,提高陽性率。但是一般情況下,經(jīng)過膠回收已經(jīng)足以把這種未線性化載體比例降低到zui低,因此反向PCR來源的線性化載體我們也推薦膠回收。

B:插入DNA片段的制備

(1). 單個插入片段克隆引物設計:克隆引物包括插入片段特異性引物序列和重疊序列。

克隆正向引物(5’-3’):線性載體正向16-25 nt重疊區(qū)序列(3’末端算起)+插入片段正向特異引物序列(18-25 nt)

克隆反向引物(5’-3’):線性載體反向16-25 nt重疊區(qū)序列(3’末端算起)+插入片段反向特異引物序列(18-25 nt)

注意:重疊區(qū)的堿基數(shù)至少16 bp,并且多段重疊區(qū)域之間的Tm值需保持一致且﹥60°C (AT pair = 2°C and GC pair = 4°C),否則可延長堿基數(shù)目直到符合要求。

按照線性載體末端的結構(5’突出,3’突出,平末端),引物設計也分3種情況,示意如下:



線性化載體的兩端因線性方式(如單酶切、雙酶切、反向PCR)不同,可以是以上三種末端結構的兩兩任意組合,插入片段特異性引物設計的原則遵循一般引物設計的原則即可。

 

計算擴增引物退火溫度時,只需計算基因特異性擴增序列的Tm值,載體末端同源序列不應參與計算。

正向引物設計舉例說明(EcoR I 酶切開):



如上圖,載體由Ecor I 酶切開,形成5’突出末端:

 

根據(jù)上述設計原則,從3’端開始計算,往回算16bp-25bp(本舉例采用了20 bp末端重疊相同序列),加到目的片段特異引物序列前面即可。確保重疊區(qū)域的Tm值保持一致且﹥60°C (AT pair = 2°C and GC pair = 4°C)。

正向引物具體如下:5' — GAGCCTAGGTGAGTTGGCCGNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3'

注意:以上引物設計完成克隆連接后,EcoR I 酶切位點將會消失(不保留酶切位點)。

如果需要保留 EcoR I 酶切位點,需要在載體末端20 bp重疊序列和目的片段特異引物序列之間補齊缺失的EcoR I 識別位點序列aattc,完成克隆連接后,EcoR I 酶切位點依然存在(保留酶切位點)。

具體如下:5' — GAGCCTAGGTGAGTTGGCCG aattc NNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3'

反向引物設計舉例說明(Hind III 酶切開):                           



如上圖,載體由Hind III 酶切開,形成5’突出末端:

 

根據(jù)上述設計原則,從3’端開始計算,往回算16bp-25bp(本舉例采用了20 bp末端重疊相同序列),加到目的片段特異引物序列前面即可。確保重疊區(qū)域的Tm值保持一致且﹥60°C (AT pair = 2°C and GC pair = 4°C)。

反向引物具體如下:5' — CTGCCATCGGATCGTTCGCANNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3'

注意:以上引物設計完成克隆連接后,Hind III 切位點將會消失(不保留酶切位點)。

如果需要保留 Hind III 酶切位點,需要在載體末端20 bp重疊序列和目的片段特異引物序列之間補齊缺失的Hind III 識別位點序列agctt Hind III 酶切位點依然存在(保留酶切位點)。

具體如下:5' — CTGCCATCGGATCGTTCGCA agctt NNNNNNNNNNNNNNNNNNNN —3'

 (2). 多個插入片段的克隆引物設計:與載體兩端連接的插入片段引物設計方法同單片段設計方法,片段與片段之間連接的插入片段引物設計方法見下圖例:



* 多個插入片段之間重疊區(qū)設計有上述*標記(藍色和紅色)的兩種方式,在多片段引物設計時,選擇任意一種方式或者兩種方式混用均可,保證片段與片段之間有15-25bp 的重疊區(qū)。

(3). 酶的選擇:建議使用高保真DNA聚合酶或者PCR Mix(貨號:P517-05或者P814-05)。

(4). 反應條件:一般按照具體使用的聚合酶說明書進行即可。

(5). 純化插入片段

l可選:如果片段來源于質粒模板,且該質粒與重組載體具有相同抗性,純化前用Dpn I內切酶消化質粒模板, 可降低背景,提高陽性率。

l如果片段單一,則建議用PCR產(chǎn)物純化試劑盒(貨號:43012-100)純化片段。

如果有非特異擴增,則建議用膠回收試劑盒(貨號:43011-100)回收片段。

使用該方法克隆,用來線性化載體的酶切位點在拼接的時候會缺失,如果對酶切位點有嚴格要求的,建議 注意酶切位點的選擇,必要時可在正反向克隆引物的重疊區(qū)序列和特異基因序列之間增加缺失掉的堿基來恢復原有酶切位點(見前述正反向引物設計舉例說明)。

如果重組質粒用于蛋白表達,則在引物設計時注意讀碼框,蛋白表達及純化所需序列(如啟動子,RBS序列,起始密碼子,終止密碼子,蛋白標簽等)不被破壞。

無縫克隆反應的操作步驟:

注意:2 × Cloning Master Mix 含有連接增強劑PEG很粘稠,從冰箱拿出來溫度低時更粘稠,可以放在手心化凍幾分鐘提高溫度便可降低粘稠度(不影響質量),手指bo打離心管底充分混勻或者渦旋震蕩混勻。

1. 按照下表建立反應體系(可使用PCR管在室溫配制)

2 × Cloning Master Mix

5 μl

Linear Vector (10-80 ng)

X μl*

Insert(s)

Y μl*

dd H2O

To 10 μl

* 載體一般用10-50 ng,插入片段與載體的摩爾比在2:1-3:1之間最佳;如果插入片段小于200bp,插入片段與載體的摩爾比用5:1,多片段連接的情況下,片段與片段之間摩爾比為1:1。

2. 輕輕混勻,在50°C反應15分鐘(可在PCR儀器上進行),反應結束后,將PCR管置冰上后直接轉化或者保存于-20°C。超過3個片段的連接,可以延長反應時間到30分鐘。

3. 取5 μl 反應產(chǎn)物按照感受態(tài)細胞說明書進行轉化(如果轉化子較少,可以將所有的產(chǎn)物轉化并將所有的轉化液涂板)。

陽性克隆的鑒定:

可根據(jù)具體情況,選擇菌落PCR鑒定,提取質粒(貨號31011-100)進行限制性內切酶鑒定或測序鑒定。


OneStepGibsonCloningKit   無縫克隆 


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